|
|
Ветеринарная вирусологияПЛАН Вопрос №1 3 Вопрос №2 3 Вопрос №3 6 Вопрос №4 10 Список использованной литературы 15 ВОПРОС №1. В каких случаях вирусная болезнь животного кончается летально? Многие вирусные болезни возникают и получают распространение только при пониженной способности животных противостоять заражению. Эта способность организма (резистентность) во многом зависит от условий кормления и содержания животных. Несбалансированное, неполноценное кормление животных, дефицит в рационе витаминов, особенно A, минеральных веществ и микроэлементов, содержание при пониженных или повышенных температурах, при высокой влажности воздуха и большом содержании в нем аммиака, сероводорода и других газов - все это снижает резистентность организма животных и как следствие приводит при заражении вирусными болезнями к летальным исходам. ВОПРОС №2. Какие методы и препараты применяются в практике для обезвреживания вирусов в скотных дворах, помещениях, трупах, навозе, кормах? Как их применяют? Для обезвреживания вирусов в скотных дворах, помещениях, трупах, навозе, кормах могут применяться химические и физические способы обработки. Наибольшее распространение имеет химическое обеззараживание по причинам сравнительной дешевизны метода и отсутствия возможности термического обеззараживания. Химическое обеззараживание или дезинфекция должна осуществляться с применением зарегистрированных Госсанэпиднадзором РФ дезинфицирующих средств. Химическая дезинфекция имеет следующие недостатки, которые заставляют относиться к этому методу как к временному, т.е. до перехода на более экологически благоприятные технологии: при выполнении операции дезинфекции у персонала часто возникают аллергические реакции и поражение кожного покрова на руках; не гарантируется полного уничтожения возможного инфекционного начала за счет неравномерности проникновения дезинфектанта и различной чувствительности некоторых микроорганизмов к хлорсодержащим препаратам; при захоронении отходов, обработанных химическими дезинфектантами, возникает значительный риск загрязнения окружающей среды (особенно, водоемов) соединениями хлора ввиду того, что для дезинфекции отходов применяется группа хлорсодержащих препаратов, как единственно экономически целесообразная; удельные затраты дезинфицирующих средств, а также затраты на предотвращение возможного экологического ущерба, существенно превышают аналогичные затраты для других способов обеззараживания. Целью проведения дезинфекции является уничтожение патогенных микроорганизмов, т.е. тех которые при достижении определенной дозы вызывают заболевание у чувствительного организма. Целью стерилизации является уничтожение всех микроорганизмов, в том числе споровых. Следует обратить внимание на различную чувствительность к химической дезинфекции некоторых групп микроорганизмов. К таким микроорганизмам относятся возбудители туберкулеза, грибковой инфекции, споровые микроорганизмы, которые обладают избирательной чувствительностью к препаратам или требуют применения более концентрированных растворов дезинфектантов. Так, на некоторых сельхозпредприятиях применяются более высокие концентрации хлорсодержащих дезинфектантов, а некоторые виды грибов (например, дерматофиты) требуют применения специальных препаратов. В последние годы появилась группа препаратов - четвертичные аммонийные соединения, которые можно считать наиболее экологически безопасными, поскольку в окружающей среде они быстро разлагаются с образованием малотоксичных соединений. Эти препараты обладают низким аллергенным действием на персонал. В настоящее время самым дешевым средством для химического обеззараживания отходов можно считать хлорсодержащие препараты, как традиционные, типа хлораминов, хлорной извести, так и препаратов полученных на основе метода электроактивации растворов - гипохлориты кальция и натрия. Уникальность этих растворов определяется активностью не столько хлорсодержащего начала, сколько высокой окисляющей способность окисей и перекисных соединений, последствия, действия которых на окружающую среду по многочисленным данным достаточно мягкие, хотя этот вопрос требует более детального изучения. ВОПРОС №3. На ферме заболели овцы. Клинические признаки: угнетенное состояние, повышение температуры тела в течение 2-3 дней до 41-42°С, потеря аппетита, у некоторых животных слизисто-гнойные истечения из глаз и носа. На малошерстных участках головы, ног, вымени, мошонке появились вначале красные пятна, переходящие в красные, а затем в серо-белые некротизирующие узелки, потом образовались корочки и эрозии. Падеж около 3% и только ягнят. На вскрытии установлены пневмония и гастроэнтерит. Другие виды животных не болели. 1. Какое вирусное заболевание можно предполагать на основании приведенных данных? На основании приведенных в условии данных можно предположить у овец такое вирусное заболевание, как оспа. Оспой болеют млекопитающие более 23 видов, птицы 5 видов и насекомые 16 видов. Одни вирусы оспы вызывают болезнь у животных только определенных видов, другие - нескольких видов. У одних животных оспа вызывается только одним возбудителем, у других, кроме своего (генуинного), еще двумя-тремя вирусами. Клинически оспа у всех животных протекает хотя и неодинаково, но очень сходно. Поражения наблюдаются на слизистых оболочках и коже преимущественно на бесшерстных (бесперьевых) участках тела с одновременной генерализацией процесса. В типичном случае поражения кожи и слизистых оболочек состоят в образовании розеол (покраснений), переходящих в папулы (припухлости) и везикулы (пузырьки). Последние превращаются в пустулы, разрывы которых сопровождаются вытеканием жидкости, засыхающей в виде корок с эрозиями под ними (струп). После заживления эрозий корки отпадают и остаются небольшие рубцы. Из признаков генерализации процесса для оспы характерны лихорадка, вялость, потеря аппетита, отек подкожной клетчатки, у кур - дифтероидные наложения в дыхательных путях. Вирусы оспы образуют вирионы, размер которых достигает 260X390 нм. Они являются гигантами среди вириоиов других вирусов. Их можно видеть не только под электронным, но и под световым микроскопом. Оспа легко передается от больных животных здоровым различными путями. Легко удается и экспериментальное заражение животных. Некоторые вирусы оспы способны размножаться на хорионаллантоисной оболочке куриных эмбрионов, образуя характерные некротические узелки - оспины (их морфология у разных вирусов неодинакова). Размножаются оспенные вирусы и на первичных культурах клеток своего вида животных с образованием ЦПД. Подобно другим вирусам, антигены оспенных вирусов обнаруживаются в различных материалах с помощью МФА и РДП. 2. Какой материал взять для лабораторного исследования; правило его транспортировки в лабораторию. Для исследования на оспу направляют в лабораторию свежие трупы животных. Трупы мелких животных перед отправкой на исследование обрабатывают инсектицидами. Патологический материал упаковывают в пластмассовые мешки, вкладывают в плотно закрывающиеся ящики с влагопоглощающей прокладкой, пропитанной дезинфектантом. Материал и сопроводительное письмо, в котором указаны отправитель и его адрес, вид животного, анамнестические данные и обоснование подозрения в заболевании животного бешенством, дата и подпись врача, отправляют с нарочным. 3. Назвать цели, методы и последовательность лабораторных исследований взятого патологического материала. Диагноз на оспу обычно нетрудно поставить на основании симптомов болезни с учетом эпизоотологических данных. Однако рекомендуется подтвердить клинико-эпизоотологический диагноз данными лабораторных исследований, основанных на свойствах вирусов оспы. Из лабораторных методов универсальным можно считать вирусоскопию - обнаружение в материале от больных животных вирионов оспенных вирусов с помощью световой микроскопии. Для этого с участка кожи или слизистой оболочки с оспенным поражением (лучше на стадиях папулы или везикулы) готовят мазки на предметных стеклах. Мазки окрашивают различными методами, из которых наибольшее признание получил метод серебрения по М.А. Морозову. Для окраски мазков на оспу по М.А. Морозову готовят 3 реактива. Реактив № 1 (жидкость Руге): 1 мл ледяной уксусной кислоты, 2 мл 40%-ного раствора формальдегида (продажный формалин) и 100 мл дистиллированной воды соединить в одном сосуде. Реактив № 2 (протрава): 5 г танина растворить в 100 мл дистиллированной воды и добавить 1 мл жидкой карболовой кислоты (фенола). Чтобы превратить кристаллическую карболовую кислоту в жидкую, ее надо расплавить на водяной бане при 56°С. Танин следует применять только хороших сортов. Для испытания на чистоту 1 г танина растворить в 5 мл воды и добавить 10 мл 90°-ного спирта. В течение 1 ч не должно появиться помутнения (декстрин, камель). Не должно быть помутнения (сахар, соли) и при последующем добавлении 5 мл эфира. Реактив № 3 (раствор аммиачного серебра): растворить 5 г кристаллического азотнокислого серебра в 1 мл дистиллированной воды. От общего раствора отлить в другой сосуд небольшую (примерно десятую) часть. К оставшемуся раствору азотнокислого серебра по каплям добавлять крепкий (25%-ный) раствор аммиака. Вначале образуется плотный буро-черный осадок, который при дальнейшем добавлении аммиака растворяется. Задача состоит в том, чтобы не доводить до полного растворения осадка, а добиться получения раствора слегка мутного (опалесцирующего). Если это не удалось и раствор стал полностью прозрачным, по каплям надо добавлять раствор азотнокислого серебра из отлитой вначале части до помутнения основного раствора. Добавляя по каплям в основной раствор то аммиак, то азотнокислое серебро, надо добиться опалесценции. Полученный опалесцирующий раствор надо развести дистиллированной водой 1 : 10 и использовать для окраски препаратов. Раствор очень стоек, но его надо хранить в темноте в склянке с притертой пробкой. Методика окрашивания по М.А. Морозову: обрабатывают препарат реактивом №1 3- 5 мин, промывают дистиллированной водой; опускают в реактив №2 с подогревом (до появления пара) на 1-2 мин, тщательно отмывают дистиллированной водой; обрабатывают реактивом №3 при легком подогревании до появления темно-коричневой окраски (1-2-мин), тщательно отмывают дистиллированной водой; сушат на воздухе и исследуют с масляной иммерсией под микроскопом. Результат: на желтом фоне мелкие темно-коричневые тельца округло-овальной формы, лежащие скоплениями, рядами или диффузной массой, но не одиночные. Эти тельца и есть вирионы оспенных вирусов. Окрашивать удобно над эмалированными кюветами (18*24) с положенными на их края "мостиками" (две пипетки на 1-2 мл, соединенные на обоих концах резиновыми трубками подходящего диаметра). Для каждого реактива нужна своя пипетка (можно использовать помеченные глазные пипетки, вставляемые в проволочные гнезда флаконов с реактивами). Достоинствами метода вирусоскопии являются быстрота получения ответа, простота и доступность техники исполнения. Недостатки его в том, что метод дает четкие результаты только при исследовании мазков везикулярной жидкости (при исследовании пустул и корок результаты значительно снижаются); не позволяет дифференцировать разные вирусы оспенной группы; не позволяет легко отличать вирионы от сходных по форме клеточных элементов (во всяком случае, исследователь должен обладать значительным опытом). ВОПРОС №4. С какими вирусными заболеваниями животных вы имели возможность встречаться в своей практике? На каком основании вы считаете, что это именно названное вами заболевание, как его диагностировали и какие меры принимали для его ликвидации. В своей практике приходилось встречаться с бешенством у коров. Бешенство - острая инфекционная болезнь, протекающая с тяжелым поражением нервной системы, как правило, с летальным исходом. Восприимчивы человек и все млекопитающие животные. Бешенство распространено повсеместно. Возбудителя инфекции передают собаки, кошки, дикие грызуны и хищники, а также кровососущие летучие мыши - вампиры. Продолжительность инкубационного периода зависит от места и силы укуса, количества и вирулентности попавшего в рану вируса, резистентности покусанного животного. Инкубационный период длится от 1-3 нед до года и даже более. Болезнь протекает остро. Клинические признаки ее в основном одинаковы у всех животных, но наиболее типичны они у собак, у которых может наблюдаться как буйное, так и тихое (паралитическое) течение болезни. У крупного рогатого скота бешенство может протекать атипично (потеря аппетита, атония рубца, паралич глотки, слюнотечение). Стадии возбуждения может не быть. Патологоанатомические изменения не специфичны. У мясоедных (в основном у собак) в желудке можно обнаружить инородные предметы. Вирус бешенства обладает выраженной нейропробазией. Проникая с периферии (место укуса) по нервным стволам в центральную (нервную систему центростремительно, он распространяется в организме центробежно по периферическим нервам и попадает в разные органы, включая слюнные железы. Вирус относится к семейству Rhabdoviridae, роду Lyssavirus. Вирионы имеют форму стержня с обрубленным концом. Вирион вируса - РНК-содержащий со спиральным типом симметрии, имеет липопротеид-ную оболочку. Низкие температуры консервируют вирус. Температура 60°С убивает его через 5-10 мин, солнечный свет - за 5-7 дней. Растворы формалина, фенола, соляной кислоты (5%-ные) инактивируют вирус за 5-10 мин. Вирион вируса бешенства содержит гликопротеидный (наружный) и нуклеокапсидный (внутренний) антигены. Гликопротеидмый антиген индуцирует образование вируснейтрализующих антител, а нуклеокапсидный - комплемептсвязывающих и преципитирующих антител. Эпизоотические штаммы вируса бешенства в иммунобиологическом отношении родственны, но различаются по вирулентности. В организме вирус локализуется главным образом в центральной нервной системе, а также в слюнных железах и слюне. Культивируется на мышах, кроликах, морских свинках и других животных, а также в первичных культурах клеток (почки сирийского хомячка, эмбриона овец, телят и др.) и перевиваемых клетках (ВНК-21, КЭМ-1 и др.). Размножение вируса в культурах клеток не всегда проявляется ЦПД. К вирусу бешенства после предварительной адаптации восприимчивы и куриные эмбрионы. Вирус индуцирует образование цитоплазматических телец-включений, которые чаще всего обнаруживают в клетках аммонова рога, мозжечка, коры головного мозга. Источником инфекции являются больные животные. Они передают вирус во время укуса. Плотоядные животные могут заражаться при поедании головного и спинного мозга погибших от бешенства животных. Доказана возможность заражения бешенством аэрогенным путем (в местах, где имеются летучие мыши). До 1960-х годов основным источником распространения бешенства были собаки и кошки, позднее лисицы, волки, корсаки и другие дикие животные. Диагноз на бешенство ставят на основании эпизоотологических, клинических данных и результатов лабораторных исследований, имеющих решающее значение. При работе с больными животными и инфекционным материалом необходимо строго соблюдать меры личной безопасности: надевать резиновые перчатки, халаты с нарукавниками, резиновый или полиэтиленовый фартук, резиновые сапоги, защитные очки, защитную маску на лицо. Вскрывать подозрительных та заболевание бешенством животных в полевых условиях запрещено. Лабораторная диагностика. Она включает: обнаружение вирусного антигена в РИФ и РДП, телец Бабеша - Негри и биопробу на белых мышатах. Методика постановки РИФ. На обезжиренных предметных стеклах готовят тонкие отпечатки или мазки из различных отделов головного мозга левой и правой стороны (аммонов рог, кора полушарий, мозжечок и продолговатый мозг). Готовят не менее двух препаратов каждого отдела мозга. Можно также исследовать спинной мозг, подчелюстные слюнные железы. Для контроля делают препараты из мозга здорового животного (обычно белой мыши). Препараты высушивают на воздухе, фиксируют в охлажденном ацетоне (минус 15-20 °С) от 4 до 12 ч, высушивают на воздухе, наносят флуоресцирующий гамма-глобулин, помещают во влажную камеру при 37 °С на 25-30 мин, затем тщательно промывают физиологическим раствором или фосфатным буфером с рН 7,4, споласкивают дистиллированной водой, высушивают на воздухе, наносят нефлуоресцирующее иммерсионное масло и просматривают под люминесцентным микроскопом. В препаратах, содержащих антиген вируса бешенства, наблюдаются разной величины и формы флуоресцирующие желто-зеленым цветом гранулы в нейронах, но чаще вне клеток. В контроле подобного свечения не должно быть, нервная ткань обычно светится тусклым сероватым или зеленоватым цветом. Интенсивность свечения оценивают в крестах. Отрицательным считают результат при отсутствии специфической флуоресценции. Материал от животных, вакцинированных против бешенства, нельзя исследовать в РИФ в течение 3 мес после прививки, так как может быть флуоресценция антигена вакцинного вируса. В РИФ не подлежат исследованию ткани, консервированные глицерином, формалином, спиртом и т. д., а также материал, имеющий признаки даже незначительного загнивания. РДП в агаровом геле. Метод основан на свойстве антител и антигенов диффундировать в агаровом геле и при встрече образовывать видимые визуально линии преципитации (комплекс антиген ++ антитело). Применяют для обнаружения антигена в мозге животных, павших от уличного вируса бешенства, или при экспериментальной инфекции (биопроба). Реакцию ставят на предметных стеклах, на которые наливают 2,5-3 мл расплавленного 1,5%-ного раствора агара. После застывания в агаре делают лунки по трафарету диаметром 4-5 мм, помещенному под предметное стекло с агаром. Агаровые столбики вынимают ученическим пером. Лунки в агаре заполняют компонентами по схеме. От крупных животных исследуют все отделы головного мозга (левой и правой стороны), от средних (крысы, хомяки и др.) - какие-либо три отдела мозга, у мышей - весь мозг. С помощью пинцета из мозга готовят пастообразную массу, которую и помещают в соответствующие лунки. Контроли с положительным и отрицательным антигенами ставят на отдельном стекле по тому же трафарету. После заполнения лунок компонентами препараты помещают во влажную камеру и ставят в термостат при 37 °С на 6 ч, затем при комнатной температуре на 18 ч. Учет результатов ведут в течение 48 ч. Реакцию считают положительной при появлении одной или 2-3 линий преципитации любой интенсивности между лунками, содержащими суспензию мозга и антирабический гамма-глобулин. Бактериальная нестерильность и загнивание мозга не препятствуют использованию его для РДП. Материал, консервированный глицерином, формалином и другими средствами, для РДП не пригоден. Выявление телец Бабеша - Негри. На предметных стеклах делают тонкие мазки или отпечатки из всех отделов головного мозга (как для РИФ), не менее двух препаратов с каждого отдела мозга, окрашивают по одному из методов (по Селлерсу, Муромцеву, Манну, Ленцу и т.д.). Пример окраски по Селлерсу: на свежий, невысохший препарат наносят краситель, покрывая им весь препарат, выдерживают 10-30 с и смывают фосфатным буфером (рН 7,0-7,5), высушивают в вертикальном положении при комнатной температуре (в затемненном месте) и просматривают под микроскопом с масляной иммерсией. Положительным результатом считают наличие телец Бабеша - Негри - четко очерченных овальных или продолговатых гранулированных образований розово-красного цвета, расположенных в цитоплазме клеток или вне их. Данный метод имеет диагностическое значение только при обнаружении типичных специфических включений. СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ Акбаев М.Ш., Водянов А.А., Косминков Н.Е. и др. Паразитология и инвазионные болезни животных: Учебник для вузов (под ред. док.вет.наук, проф. Акбаева М.Ш.). - М., 2001. Лютинский С.И., Степин В.С. Практикум по патологической физиологии сельскохозяйственных животных. Учебник. - М., 2001. Основы ветеринарии. - М., 2001. Троценко Н.И., Белоусова Н.И., Преображенская Э.А. Практикум по ветеринарной вирусологии. - М., 1989. 14 Работа на этой странице представлена для Вашего ознакомления в текстовом (сокращенном) виде. Для того, чтобы получить полностью оформленную работу в формате Word, со всеми сносками, таблицами, рисунками, графиками, приложениями и т.д., достаточно просто её СКАЧАТЬ.  |
|
Банк готовых работ
Форма заказа
Скачать работу
экономические  Copyright © refbank.ru 2005-2024
Все права на представленные на сайте материалы принадлежат refbank.ru. Перепечатка, копирование материалов без разрешения администрации сайта запрещено. |
|